免疫熒光（Immunofluorescence）通過(guò)特異性熒光抗體結(jié)合細(xì)胞內(nèi)的生物靶標(biāo)抗原，從而實(shí)現(xiàn)對(duì)靶標(biāo)分子在細(xì)胞內(nèi)的分布及定位分析。該方法可以對(duì)組織塊兒、培養(yǎng)細(xì)胞或單個(gè)細(xì)胞進(jìn)行標(biāo)記，用于分析蛋白、糖原、及生物/非生物小分子，與此同時(shí)，免疫熒光也可以DAPI、Hochest33342等其他非抗體熒光標(biāo)記染料聯(lián)合使用。
　　
　　免疫熒光方法中的重要環(huán)節(jié)：
　　
　　1.冰凍切片制備：建議用新鮮組織，否則組織細(xì)胞內(nèi)部結(jié)構(gòu)破壞，易使抗原彌散。選用干凈鋒利的刀片、組織一定要冷凍適度等，防止裂片和脫片嚴(yán)重。
　　
　　2.組織切片固定：切好片風(fēng)干后立即用冰丙酮等固定液進(jìn)行固定5-10min，尤其要較長(zhǎng)時(shí)間保存的白片，一定要及時(shí)固定和適當(dāng)保存。
　　
　　3.血清封閉：為防止內(nèi)源性非特異性蛋白抗原的結(jié)合，需要在一抗孵育前先用血清（與二抗來(lái)源一致）封閉，減弱背景著色。血清封閉的時(shí)間是可以調(diào)整的，一般10-30min。
　　
　　4.一抗孵育條件：在免疫組化反應(yīng)中重要，包括孵育時(shí)間和抗體濃度。一抗孵育溫度有幾種：4度、室溫、37度，其中4度效果佳；孵育時(shí)間：這與溫度、抗體濃度有關(guān)，一般37度1-2h，而4度過(guò)夜和從冰箱拿出后37度復(fù)溫45min。具體條件還要摸索。
　　
　　5.二抗孵育條件：二抗一般室溫或37度30min-1h，具體時(shí)間需要摸索，而濃度一般有工作液，若是濃縮液還要摸索濃度，切記要避光反應(yīng)。但在免疫熒光中我們一般先把二抗?jié)舛群头跤龝r(shí)間先定下，然后去摸索一抗?jié)舛群头跤龝r(shí)間。后，熒光素標(biāo)記的二抗隨著保存時(shí)間的延長(zhǎng)，可能后有大量的游離熒光素殘留，需要注意配制時(shí)小包裝和并進(jìn)行適當(dāng)?shù)碾x心。
　　
　　6.復(fù)染：目的是形成細(xì)胞輪廓，從而更好地對(duì)目標(biāo)蛋白進(jìn)行定位。一般常用DAPI復(fù)染。
　　
　　7.封片：為了長(zhǎng)期保存，我們一般用緩沖甘油等封片，此外還有專(zhuān)門(mén)的抗熒光萃滅封片液。避免產(chǎn)生氣泡，方法是直接在載玻片組織上滴一滴封片液，然后一手拿住蓋片某一拐角，而另一手拿對(duì)面的那個(gè)拐角，接近封片液近端的拐角先降低，直至接觸到液體時(shí)為止；當(dāng)發(fā)現(xiàn)液體接觸面在不斷彌散時(shí)，則可以緩慢降低另一拐角，這樣一般不會(huì)產(chǎn)生氣泡。
　　
　　 8.切片清洗：為了防止一抗、二抗等試劑殘留而引起非特異性染色，所以適當(dāng)?shù)丶訌?qiáng)清洗（延長(zhǎng)時(shí)間和增多次數(shù)）尤為重要，我一般在一抗孵育前的清洗是3min×3次，而一抗孵育后的清洗均為5次×5min。